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J. Am. Chem. Soc.|配體導向光催化劑和遠紅光催化活細胞內(nèi)生物正交脫籠

分享的是一篇今年3月份發(fā)表在JACS上的文章,本文的通訊作者Joseph M. Fox是來自特拉華大學化學和生物化學系教授,研究集中在開發(fā)新型化學反應,將這些新反應應用于具有生物功能的自然產(chǎn)生和設計的分子的合成,以及將設計概念應用于生物學和材料科學的有機合成。



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在實現(xiàn)生物系統(tǒng)控制所需的時空控制方面,光發(fā)揮了關鍵作用。傳統(tǒng)上,這些過程是通過紫外線或短波長光的激發(fā)來激活的。光籠和光親和標記已經(jīng)成為調(diào)節(jié)和探測小分子活性的主要手段,而光活化生物正交化學(光點擊化學)已成為標記生物分子的工具。突出的例子光催化和長波長的光被用來啟動二氫四嗪(DHTz)的氧化,從而激活與熒光標記的反環(huán)辛烯的快速雙分子化學反應。


硅羅丹明(SiR)染料,更常規(guī)地用作生物熒光團,用作具有高細胞相容性重新利用為光催化劑。市售的Hoechst染料(SiR-H)和多烯紫杉醇(SiR-T)的偶聯(lián)物分別用于將SiR定位到細胞核和微管。作者設計了一類新型氧化還原激活光籠,以釋放苯酚或n-CA4(一種微管去穩(wěn)定劑),僅使用2 μM SiR和40 μM 光籠就可以在5分鐘內(nèi)完成光脫籠(圖1)。


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Fig1.遠紅光對亞細胞定位的光催化脫籠


首先,作者設計了一種基于二氫四嗪-四嗪氧化還原化學的光催化誘導型光籠,設計了結構A的DHTz-乙烯基醚,氧化后生成四嗪B,該四嗪B位于分子內(nèi)4+2環(huán)加成反應中生成加合物C,DFT計算用來預測分子內(nèi)環(huán)加成的可行性(圖2)。

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Fig2.新型光脫籠分子設計


之后,作者合成了合成了基于DHTz的光氧化籠,化合物1被設計用來釋放噠嗪2和n-CA4,這是一種強效的微管蛋白抑制劑。還制備了對照化合物4,它是1的二氫類似物,缺乏烯烴基,因此不能釋放n-CA4。SiR-Hoechst共軛物SiR-H衍生物將熒光基團鎖定在細胞核中的DNA上,而SiR-docetaxel共軛物SiR-T將熒光基團鎖定在管蛋白上(圖3)。

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Fig3. 光籠化合物的合成


作者使用紫外可見分光和HPLC分析監(jiān)測使用模型化合物3的光催化氧化和脫籠研究(Fig4)。在SiR(2 μM,5 mol %)的存在下,用660 nm的光照射3(40 μM)20分鐘,導致2和苯酚的釋放。通過HPLC,產(chǎn)品的產(chǎn)率分別為86%和84%(圖4A)。每隔20秒用紫外-可見光譜儀監(jiān)測脫籠,以跟蹤起始材料、中間產(chǎn)物和產(chǎn)物的存在(圖4C)。

化合物3在227 nm處有紫外可見的最大吸收,而產(chǎn)物化合物2在275 nm處有紫外最大吸收。在光化學反應過程中進行了紫外可見光譜監(jiān)測,顯示由于3的轉化,227 nm處的吸光度下降,同時275 nm處的吸收增加(圖4B,C)。在實驗過程中,310 nm處的吸收暫時增加,然后減少,這與一個中間物的形成相一致。這個中間物引起的吸收在80 s后達到最大值(圖4C,D中的藍線),并以半衰期~100 s衰減。

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Fig4. 光催化釋放研究


接下來,作者使用化合物1和核定位的SiR-H光催化劑處理NIH3T3小鼠成纖維細胞來研究細胞內(nèi)n-CA4的光脫籠。對于載體對照(DPBS中的0.1% DMSO),細胞表現(xiàn)出拉長、聚合和有組織的微管結構(圖5B,左)。用n-CA4(10 nM)處理后,細胞顯示出微管細胞骨架的崩潰和細胞面積的減少(圖5B,中)。同樣,用光催化脫籠處理的細胞表現(xiàn)出解聚的微管(圖5B,右)。

然后將每個樣品的平均面積進行歸一化,并繪制出樣品與vehicle對照之間的百分比差異(圖5C)。負值的數(shù)據(jù)表示細胞面積相對于對照的減少,意味著微管解聚,而數(shù)據(jù)在零或零左右表示細胞面積變化不大。與對照相比,用n-CA4處理的細胞在光照下顯示出20%(+/-4.2%)的細胞面積減少。同樣,在脫籠條件下(化合物1+SiR-H+光)處理的細胞,面積減少21%(+/-3.0%)。在沒有光或光催化劑的情況下,1對細胞面積沒有明顯影響。用4處理的細胞,缺乏釋放所必需的烯烴,無論是否有光催化劑和/或光,都沒有顯示細胞面積的變化(圖5C)。此外,使用缺少誘導脫籠的條件(缺乏光、SiR-H或烯)處理細胞顯示拉長和有組織的微管(圖5D)。

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Fig5. 定位于亞細胞內(nèi)光脫籠


為了進一步證明光脫籠是由于SiR-H的亞細胞定位而發(fā)生的,抗壞血酸被用來作為光催化的細胞外淬滅劑。由于抗壞血酸(Ascorbate)的細胞滲透性很差細胞內(nèi)定位的SiR-H不會受到抗壞血酸的影響,所以仍然可以觀察到成功的脫籠(圖6A)。然而,細胞不可滲透的SiR衍生物(SiR-X)(圖6D)將被抗壞血酸淬滅,預計不會發(fā)生光脫籠(圖6B)。如預期,單獨用抗壞血酸處理的細胞顯示出拉長的微管結構,而用n-CA4和抗壞血酸處理則導致微管解聚。在抗壞血酸存在的情況下,1+SiR-H(定位到細胞核),顯示出解聚的微管,與成功光脫籠一致(圖6E)。然而,在相同的條件下,用1+SiR-X,即細胞不可滲透的光催化劑處理,并沒有導致微管的解聚。這些結論得到了細胞面積定量數(shù)據(jù)的進一步支持(圖6F)。

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Fig6. 光脫籠發(fā)生在細胞內(nèi)環(huán)境


最后,作者通過共聚焦顯微鏡來觀察細胞中光催化脫籠的實時結果。通過將SiR定位到微管蛋白(SiR-T)上,對微管進行成像,每5分鐘一次,持續(xù)45分鐘。在這段時間內(nèi),可以觀察到穩(wěn)定的微管解聚,45分鐘后,微管結構的大小和亮度減弱,正常的微管中看到的細長結構消失(圖7A)。在缺少烯烴對照實驗中,沒有看到微管結構的變化,這表明光照射對脫籠是必要的(圖7B)。


Fig7. 定位于微管蛋白(SiR-T)的光脫籠實時成像


總之,作者描述了一種基于分子內(nèi)四嗪連接的新型光籠,并在活細胞的細胞器水平上激活。使用市售的Sia-Hoechst(SiR-H)和SiR-docetaxel(SiR-T)分別定位于細胞核和微管,并使用一類新的氧化還原激活的光脫籠釋放微管去穩(wěn)定劑n-CA4。實驗表明,n-CA4在細胞內(nèi)而不是在細胞外環(huán)境實驗光脫籠。使用SiR-T,可作為光催化劑和微管解聚的熒光報告基因,可以實時顯示活細胞中光催化脫籠的結果。


文章作者:WCJ

原文引用:10.1021/jacs.2c10655

責任編輯:LD




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